引言

近年來，納米技術在生物醫學領域的應用日益廣泛，其中硅納米顆粒因其獨特的物理化學性質和良好的生物相容性而備受關注。硅納米顆粒具有可調控的粒徑、高比表面積和易于表面修飾等特點，使其成為基因遞送和藥物載體的理想候選材料。然而，未經修飾的硅納米顆粒在生物應用中仍面臨一些挑戰，如細胞攝取效率低、靶向性差等。

多聚賴氨酸作為一種陽離子聚合物，具有良好的生物相容性和可降解性，能夠與帶負電荷的DNA或RNA通過靜電作用形成復合物，從而提高基因轉染效率。將多聚賴氨酸修飾到硅納米顆粒表面，不僅可以改善納米顆粒的分散性和穩定性，還能增強其與細胞的相互作用，提高基因遞送效率。

本研究旨在制備多聚賴氨酸修飾的硅納米顆粒，并系統評估其理化性質、細胞毒性和基因轉染效率。通過優化制備工藝和表征方法，我們希望開發出一種高效、安全的基因遞送系統，為基因治療和藥物遞送提供新的思路和方法。

一、實驗部分

1.1 材料與儀器

實驗所用試劑包括正硅酸乙酯（某試劑）、多聚賴氨酸（某試劑）、無水乙醇（某試劑）等。主要儀器設備包括威尼德電穿孔儀、威尼德紫外交聯儀、動態光散射儀（某品牌）、透射電子顯微鏡（某品牌）、流式細胞儀（某品牌）等。

1.2 硅納米顆粒的制備

采用溶膠-凝膠法制備硅納米顆粒。將正硅酸乙酯與無水乙醇按1:4的體積比混合，加入適量去離子水，用氨水調節pH至9-10。在室溫下攪拌反應24小時，得到硅納米顆粒溶膠。通過離心分離并用無水乙醇洗滌3次，最后將顆粒重新分散在去離子水中，得到硅納米顆粒懸浮液。

1.3 多聚賴氨酸修飾

將制備的硅納米顆粒懸浮液與多聚賴氨酸溶液按一定比例混合，在室溫下攪拌反應6小時。通過離心去除未結合的多聚賴氨酸，將修飾后的納米顆粒重新分散在PBS緩沖液中，得到多聚賴氨酸修飾的硅納米顆粒（PLL-SiNPs）。

1.4 表征與性能測試

采用動態光散射儀測定納米顆粒的粒徑分布和zeta電位。使用透射電子顯微鏡觀察納米顆粒的形貌和分散性。通過MTT實驗評估納米顆粒的細胞毒性。利用流式細胞術和熒光顯微鏡觀察納米顆粒的細胞攝取和基因轉染效率。

二、結果與討論

2.1 納米顆粒表征

動態光散射結果顯示，制備的硅納米顆粒平均粒徑為85±5 nm，多聚賴氨酸修飾后粒徑略有增加，達到95±6 nm。zeta電位分析表明，未修飾的硅納米顆粒表面帶負電荷（-25.3 mV），而經多聚賴氨酸修飾后，表面電荷轉變為正電荷（+18.7 mV），這有利于納米顆粒與帶負電荷的細胞膜相互作用。透射電子顯微鏡觀察顯示，制備的納米顆粒呈球形，分散性良好，粒徑分布均勻。

2.2 細胞毒性評估

MTT實驗結果表明，在0-100 μg/mL濃度范圍內，PLL-SiNPs對HeLa細胞的存活率無明顯影響，細胞存活率均保持在90%以上。當濃度達到200 μg/mL時，細胞存活率仍高于80%，表明制備的PLL-SiNPs具有良好的生物相容性。與未修飾的硅納米顆粒相比，PLL-SiNPs顯示出更低的細胞毒性，這可能是由于多聚賴氨酸修飾改善了納米顆粒的表面性質，減少了與細胞的非特異性相互作用。

2.3 細胞轉染效率

流式細胞術和熒光顯微鏡觀察結果顯示，PLL-SiNPs能夠有效地將綠色熒光蛋白（GFP）基因轉染至HeLa細胞中。在最佳轉染條件下（納米顆粒/DNA質量比為20:1），轉染效率達到65%以上，顯著高于未修飾的硅納米顆粒（約30%）和商用轉染試劑Lipofectamine 2000（約55%）。此外，PLL-SiNPs在不同細胞系中均表現出較高的轉染效率，顯示出良好的通用性。

2.4 轉染機制探討

多聚賴氨酸修飾不僅提高了硅納米顆粒的表面正電荷，還增強了其與DNA的復合能力。通過威尼德電穿孔儀和威尼德紫外交聯儀的輔助實驗，我們發現PLL-SiNPs主要通過網格蛋白介導的內吞途徑進入細胞。進入細胞后，納米顆粒能夠有效地逃逸溶酶體，將DNA釋放到細胞質中，從而實現高效的基因轉染。

三、結論

本研究成功制備了多聚賴氨酸修飾的硅納米顆粒，并系統評估了其理化性質和細胞轉染效率。結果表明，PLL-SiNPs具有均勻的粒徑分布、良好的分散性和生物相容性。多聚賴氨酸修飾顯著提高了硅納米顆粒的基因轉染效率，在最佳條件下可達到65%以上，優于未修飾的硅納米顆粒和商用轉染試劑。此外，PLL-SiNPs在不同細胞系中均表現出較高的轉染效率，顯示出良好的通用性。這些特性使PLL-SiNPs成為一種有潛力的基因遞送載體，為基因治療和藥物遞送提供了新的選擇。未來的研究將著重于進一步優化納米顆粒的制備工藝，評估其在體內的基因遞送效率和安全性，以推動其在實際生物醫學應用中的轉化。

參考文獻

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