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2025-01-10 17:02:33單細胞進樣系統(tǒng)及微流注射泵: 單細胞進樣系統(tǒng)及微流注射泵是生命科學(xué)研究中的關(guān)鍵設(shè)備。單細胞進樣系統(tǒng)能精確操控單個細胞進入分析或培養(yǎng)環(huán)境，適用于高通量單細胞分析。微流注射泵則通過微量流體控制，實現(xiàn)精確、穩(wěn)定的液體輸送，常用于細胞培養(yǎng)、藥物篩選等實驗。兩者結(jié)合，可顯著提高實驗的精確度和效率，是細胞生物學(xué)、分子生物學(xué)等領(lǐng)域研究的重要工具。儀器網(wǎng)提供多款高性能單細胞進樣系統(tǒng)及微流注射泵，歡迎咨詢選購。

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采用單細胞ICPMS直接分析富硒酵母細胞稀釋懸浮液，可以直接檢測和表征單個細胞中微量元素含量和質(zhì)量分布，有助于實時監(jiān)測酵母發(fā)酵過程中硒的摻入水平并優(yōu)化硒暴露的形式和劑量。

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單細胞進樣系統(tǒng)及微流注射泵問答

2020-05-24 08:37:51微流控注射泵步進電機和微步長的介紹（Chemyx注射泵為例）: 注射泵由于可實現(xiàn)高精度和無脈沖流動而被廣泛應(yīng)用于微流體領(lǐng)域，這主要得益于微型步進電機。什么是微步長步進電機？微型步進電機是無刷直流電動機，它以很小的步長移動以完成完整的旋轉(zhuǎn)，因此，與常規(guī)電機不同，它能夠提供精確的角運動并保持扭矩。步進電機是如何工作的？驅(qū)動微型步進電機有不同的結(jié)構(gòu)和模式。混合同步步進電機是Z常用的，它結(jié)合了永磁體和可變磁阻結(jié)構(gòu)，可在小尺寸下實現(xiàn)Z大功率。在步進電機中，轉(zhuǎn)子和定子的劃分與齒輪中的齒類似，這些齒的對齊是控制轉(zhuǎn)子運動的方式。Z直接的驅(qū)動模式是整步（全步長），但是在這種模式下，每步之間的振動和噪音是顯而易見的。步進電機如何控制精度？通常，微型步進電機的角度精度約為每轉(zhuǎn)±1.8°或200steps，但是，當(dāng)需要更高的分辨率時，微步進或微步長（micro-stepping）是一種很好的解決方案。微步進是一種通過脈寬調(diào)制電壓控制流向步進電機繞組（或定子）的電流的方法，這意味著流到繞組的電流具有正弦波形。這種控制方法允許每1.8度的步長劃分多達64次，每轉(zhuǎn)產(chǎn)生0.028°的角步長或12800微步長，從而提供了更平滑、更精確的操作。步進電機如何控制分辨率？盡管微步進增強了扭矩產(chǎn)生、低速運動和共振，但是，由于實際驅(qū)動器無法達到理想的微步進，因此仍然存在一些扭矩波動、振動和噪音。因此，至關(guān)重要的是要避免所謂的“空分辨率”，因為步長的劃分要比電機限制要高。空分辨率意味著步長產(chǎn)生的扭矩不足以克服正在驅(qū)動的組件的摩擦，從而產(chǎn)生抖動的運動。步進電機的應(yīng)用微型步進電機的主要優(yōu)點是可精確重復(fù)的步長，精確的運動增量和低速下的更高扭矩。但是，這些電機的一些缺點是效率低，高速時扭矩有限，無反饋。步進電機的屬性使其非常適合精密的應(yīng)用，例如YL掃描儀、3D打印機、CNC、相機平臺、繪圖儀、機器人和自動化過程。在注射泵中，步進電機對于避免脈沖流和流量變化，對于確保穩(wěn)定性和可靠性至關(guān)重要。Chemyx注射泵Chemyx注射泵使用微步進電機，可提供更高的準確度和精度，F(xiàn)usion100，F(xiàn)usion4000和NanoJet立體定位注射泵具有0.9°的微步進電機，對于Fusion4000來說，步進電機每步可提供0.0939 μm，這種出色的調(diào)諧運動可實現(xiàn)0.0001μL/min的流量。通過這種方式，Chemyx注射泵系統(tǒng)比DIY設(shè)備提供了更高的質(zhì)量和性能。Chemyx步進電機的質(zhì)量使生物技術(shù)、化學(xué)、生物化學(xué)和材料應(yīng)用中的流體流動更加順暢。總結(jié)通常，步進電機的角度精度約為±1.8°，Chemyx提供的0.9°步進電機要優(yōu)于傳統(tǒng)電機型號。結(jié)束語到目前為止，我們已經(jīng)解決了步進電機的功能及其在Chemyx注射泵中的作用，微步長是Chemyx注射泵中包含的一種直接集成技術(shù)，它可以實現(xiàn)高準確度和高精度的調(diào)諧運動。

2020-05-24 08:39:17微流控注射泵的線性力介紹: 在為您的實驗應(yīng)用選擇注射泵時，壓力可能是一個重要的考慮因素，但是如何知道哪個泵可以滿足要求呢？使用單個注射器或者多個注射器都會影響壓力。要計算泵的Z終壓力，我們需要知道泵的線性力，該線性力與注射器將要承受的壓力直接相關(guān)。因此，本文將討論線性力，如何計算線性力以及線性力為什么很重要。我們將介紹線性力的基本原理，以了解注射泵背后的機理。我們還將通過示例計算力和壓力。希望通過本文的介紹，您將對注射泵的工作方式有更深入的了解。線性力基礎(chǔ)注射泵使用步進電機線性致動器，將旋轉(zhuǎn)運動轉(zhuǎn)換為線性運動，這意味著電動機的力將從扭矩傳遞到線性力。為了計算給定設(shè)備中的線性力，我們必須考慮4個因素：摩擦力、加速度力、重力和施加的作用力。線性力定義如下：總線性力（TLF）=F（摩擦力）+F（加速度力）+F（重力）+F（施加的作用力）施加的作用力是由步進電機提供的力，但是，凈力由于摩擦而減小（在較高的速度下為較低的力）。實際上，摩擦力被當(dāng)作校正效率方面反映電動機Z大力的一個因素。效率還受到執(zhí)行器中使用的螺桿（長度和螺距）的影響，螺桿改變了移動注射器活塞的螺母的速度。考慮到這些特性，我們可以使用以下公式計算線性力。線性力=（馬達或電機的Z大力 × 2π × 效率）/螺距Linear Force = (Maximum force of the motor × 2π × efficiency)/pitch例如，具有0.5Nm的電機和1mm螺距的螺桿和1mm/s速度的0.8效率的線性致動器的線性力為：線性力=（0.5Nm × 2×3.14× 0.8）/0.001m=2512 N=564.69 lbfLinear force= (0.5 Nm × 2×3.14×0.8)/0.001 m = 2512 N = 564.69 lbf如前所述，注射器中的壓力與泵的線性力有關(guān)。回想一下，壓力是在給定區(qū)域中施加的力的大小，例如，在這種情況下，如果我們使用直徑為0.3-inch的注射器，則Z終壓力將為：壓力=564.69 lbf/（π/4 × (0.3)^2）=7998.44 psiPressure = 564.69 lbf/(π/4 × (0.3)^2) = 7998.44 psi由于壓力與面積有關(guān)，因此，如果我們使用2個直徑為0.3-inch的注射器，則每個注射器承受的力和壓力是所計算壓力的一半。注射泵的優(yōu)點之一是，由于注射器中的面積小，我們可以承受高壓，這使得使用高質(zhì)量的注射器（用于高壓的不銹鋼）至關(guān)重要。總之，我們可以說，了解注射泵的線性力對于實驗應(yīng)用選擇正確的型號是非常重要的，例如，粘性液體需要更高的壓力，或者您可能想要使用多個通道。

2022-12-09 13:39:03微流圖像法粒度儀——微流動態(tài)圖像法的重要特點: 隨著生物醫(yī)藥的發(fā)展，對不溶性微粒的檢測要求又提出了新的挑戰(zhàn)，就是硅油、蛋白自身的聚集的問題，常規(guī)的光阻法和顯微計數(shù)法不溶性微粒儀的測試會把蛋白本身判定為不溶性顆粒，如此這兩種測試方式都存在一定的限度。需要新的微流動態(tài)圖像法（Flow Imaging）儀器做測試。微流圖像法粒度儀是采用動態(tài)流式成像檢測的特點是：樣本在流經(jīng)樣本檢測池的過程中，在固定的檢測窗口處，由高精密高頻成像儀對流經(jīng)的樣品進行拍照，獲取一系列的數(shù)據(jù)照片，通過軟件對所獲取的顆粒照片進行歸類和計數(shù)分析的自動化系統(tǒng)。隨著圖像處理技術(shù)的發(fā)展以及計算機處理速度的提升，短時間內(nèi)對大量的顆粒圖像進行分析處理成為了可能。粒度粒形分析技術(shù)可實現(xiàn)對顆粒物進行整體形態(tài)學(xué)評價，形態(tài)成像技術(shù)是目前顆粒物性表征中不可缺少的先進技術(shù)。擁有自動、快速、全面的顆粒評價系統(tǒng)，可解決材料顆粒的形態(tài)、大小、穩(wěn)定性在整個開發(fā)和制造過程的表征難題，可為過程控制和優(yōu)化提升提供快速識別的檢測手段。梓夢科技M3000 微流圖像法不溶性微粒儀采用動態(tài)圖像法原理（Flow Imaging），符合ISO 13322-2標準要求1）采用變倍遠心鏡頭，輕松實現(xiàn)300nm-1000μm顆粒成像； 2）采用藍色脈沖光，可有效避免運動虛影； 3）軟件自動識別鏡片上的粘附顆粒，避免重復(fù)計數(shù)；更多功能等您來了解。歡迎寄送樣品過來，給您免費測試。

2023-03-07 22:09:15高通量單細胞力譜測定！多功能單細胞顯微操作技術(shù)助力單細胞力學(xué)研究: 單程細胞具有復(fù)雜生物學(xué)性質(zhì)，它們通過細胞外基質(zhì)ECM形成緊密的細胞與基質(zhì)細胞與細胞連接，諸如上皮細胞通過這種特殊的鏈接方式構(gòu)成了屏障層保護人體免受外界損傷。因此細胞之間以及細胞基底的粘附力測定對于研究細胞粘附蛋白的機制有著重要意義。使用力學(xué)工具測量細胞間以及細胞與基質(zhì)之間的粘附力始終不是一件容易的事情。首先，由于細胞與基質(zhì)的作用力僅為nN級別，因此需要力學(xué)精度較高的設(shè)備才能夠測量，而且在這其中較為適合的工具為原子力顯微鏡（AFM）。原子力顯微鏡能夠提供納米級別的操作精度并可測量從pN~nN范圍的力譜。但是受制于AFM探針本身的限制，需要借助修飾手段才能夠讓細胞與探針固定到一起，這個過程十分繁瑣，并且由于需要大量手工操作很難實現(xiàn)高通量的測量。而不同的細胞由于細胞異質(zhì)性使得要想確定粘附力需要較多樣本才能獲得相對準確的值，無法實現(xiàn)高通量測量直接限制了原子力探針在細胞粘附力上的應(yīng)用。而多功能單細胞顯微操作FluidFM技術(shù)的出現(xiàn)改變了這一現(xiàn)狀，它使用特殊的中空探針能夠輕松地通過負壓抓取細胞，取得和AFM近似精度的數(shù)據(jù)，無需在探針上進行任何修飾，不會改變細胞表面的任何通路，從而能夠得到接近細胞原生的數(shù)據(jù)。在實驗結(jié)束后能夠通過正壓快速丟棄用過的細胞，具備很高的自動化，能夠快速測量細胞粘附力。使用FluidFM對細胞操作的基本流程 FluidFM在粘附力測量上具備顯著優(yōu)勢。如圖所示，F(xiàn)luidFM能夠通過負壓將細胞吸附到原子力探針的末端，通過高精度位移臺的控制將細胞從基底上分離，并且同時記錄FD曲線。通過FD曲線能夠獲得最大粘附力Fmax和粘附能量Emax。通過高度自動化的控制系統(tǒng)能夠在短時間內(nèi)測量大量細胞粘附力，評估細胞群體分布以及細胞間差異，并且可有效避免傳統(tǒng)粘附力測量因準備時間過長而錯過最佳測量時間導(dǎo)致的細胞粘附力改變，得到更為精準的結(jié)果。近期，Agoston等人使用多功能單細胞顯微操作系統(tǒng)FluidFM實現(xiàn)了高通量細胞粘附力測量，對同種細胞不同區(qū)以及不同細胞之間的粘附力進行測量和比較。作者首先對Vero和Hela細胞在不同狀態(tài)下的粘附力進行了測量和比較，總共測量了214個細胞。通過比較明膠涂層上處于單個細胞、孤島狀細胞、致密連接細胞以及單層細胞上游離細胞之間的粘附力，能夠明顯觀測到Vero細胞處于致密連接的細胞粘附力最大，大概在750 nN左右，隨著細胞單細胞層的稀疏，細胞粘附力有所下降，而處于細胞層頂部的細胞粘附力最低僅為50 nN左右。這一點充分說明上皮細胞能夠在細胞之間形成緊密的連接，而處于細胞層外的細胞則幾乎沒有粘附力。而對于HeLa這樣的腫瘤細胞測量的結(jié)果卻顯示出了截然不同的結(jié)果，處于不同狀態(tài)的細胞有著近似的粘附力，基本都在200 nN左右，這與處于單個游離上皮細胞的粘附力十分接近，表明HeLa細胞在不同環(huán)境下仍然具有較高遷徙能力。使用FluidFM對不同區(qū)域細胞的FD曲線測定結(jié)果和對比通過對這兩種細胞的最大粘附力、最大粘附能量、最大拉伸距離和細胞接觸面積進行統(tǒng)計分析可以發(fā)現(xiàn)，HeLa腫瘤細胞在粘附力和粘附能量上均有所降低，但是當(dāng)HeLa細胞形成了單層后，兩者區(qū)別不大。對比Hela和Vero在不同生長狀態(tài)下的最大粘附力、最大粘附能量、粘附拉伸距離和粘附面積。再進一步對Vero與HeLa細胞最大粘附力與距離和接觸面積進行對比，依然可以得到與單獨比較粘附力相同的結(jié)果，并且最大能量與細胞接觸面積的比值中也存在著類似的結(jié)果。由此可見腫瘤細胞通過降低自身粘附力從而獲得了更好的遷移能力。對不同狀態(tài)Vero和A549之間的粘附力/粘附距離、粘附力/粘附面積、粘附能量/粘附面積總結(jié) 細胞粘附力測定在細胞生命科學(xué)研究中起著至關(guān)重要的作用，然而傳統(tǒng)手段中有著各種各樣的局限性，主要原因是缺乏一種有效抓取細胞并進行力學(xué)測定的手段。現(xiàn)如今FluidFM技術(shù)在細胞粘附力測定中的應(yīng)用，使得研究者們有了一種能夠有效、低損的方式抓取細胞，配合原子力顯微鏡精確測量的特性，真正意義上做到精準、無損、快速的測量單細胞粘附力，幫助研究者尋找細胞粘附力與細胞生命發(fā)展、腫瘤細胞轉(zhuǎn)移之間的關(guān)系。【參考文獻】[1] A. Sancho, M. B. Taskin, L. Wistlich, P. Stahlhut, K. Wittmann, A. Rossi & J. Groll. Cell Adhesion Assessment Reveals a Higher Force per Contact Area on Fibrous Structures Compared to Flat Surfaces. ACS Biomater. Sci. Eng. 2022, 8, 2, 649–658.[2] P.W. Doll, K. Doll, A. Winkel, R. Thelen, R. Ahrens, M. Stiesch & A.E. Guber. Influence of the Available Surface Area and Cell Elasticity on Bacterial Adhesion Forces on Highly Ordered Silicon Nanopillars. ACS Omega. 2022, 7, 21, 17620–17631.[3] Sankaran, S. Jaatinen, L. Brinkmann, J. Zambelli, T. V?r?s, J. Jonkheijm, P. Cell adhesion on dynamic supramolecular surfaces probed by fluid force microscopy-based single-cell force spectroscopy. ACS Nano 2017, 11, 3867–3874.[4] Sancho, A. Vandersmissen, I. Craps, S. Luttun, A. Groll, J. A new strategy to measure intercellular adhesion forces in mature cell-cell contacts. Sci. Rep. 2017, 7, 46152.[5] Ines, Lüchtefeld. Alice, Bartolozzi. Julián M. M. Oana, Dobre. Michele, Basso. Tomaso, Zambelli. Massimo, Vassalli. Elasticity spectra as a tool to investigate actin cortex mechanics. J Nanobiotechnol. 2020, 18, 147.[6] Dehullu, J. Valotteau, C. Herman-Bausier, P. Garcia-Sherman, M. Mittelviefhaus, M. Vorholt, J. A. Lipke, P. N. Dufrene, Y. F. Fluidic force microscopy demonstrates that homophilic adhesion by Candida albicans Als proteins is mediated by amyloid bonds between cells. Nano Lett. 2019, 19, 3846–3853.[7] Mittelviefhaus, M. Müller, D. B. Zambelli, T. Vorholt, J. A. A modular atomic force microscopy approach reveals a large range of hydrophobic adhesion forces among bacterial members of the leaf microbiota. ISME J. 2019, 13, 1878–1882.[8] F. Weigl, C. Blum, A. Sancho & J. Groll. Correlative Analysis of Intra- versus Extracellular Cell Detachment Events vis the Alignment of Optical Imaging and Detachment Force Quantification. Adv. Mater. Technol. 2022, 2200195.【相關(guān)產(chǎn)品】　　多功能單細胞顯微操作系統(tǒng)- FluidFM OMNIUM:http://www.ghhbs.com.cn/zt2203/product_386418.html