摘要

研究通過構建重組畢赤酵母表達體系實現人肝細胞生長因子（hHGF）的高效分泌表達。采用PCR擴增hHGF基因并克隆至pPICZαA載體，電穿孔轉化后篩選高拷貝菌株。經甲醇誘導表達，SDS-PAGE與Western blot驗證目標蛋白，鎳柱純化后通過ELISA與細胞增殖實驗評估活性。結果表明，hHGF表達量為320 mg/L，純化后純度達95%，可顯著促進肝細胞增殖。

引言

肝細胞生長因子（HGF）是一種多效性細胞因子，在組織修復與再生中發揮關鍵作用。傳統原核表達系統因缺乏翻譯后修飾能力，難以獲得功能性HGF蛋白。畢赤酵母（Pichia pastoris）兼具真核蛋白加工能力與高密度發酵優勢，已成為復雜蛋白表達的理想平臺。本研究針對hHGF結構特點優化表達載體與誘導條件，建立穩定表達體系，并通過功能實驗驗證其生物學活性，為規模化生產提供理論依據。

實驗部分

1. 材料與儀器

1.1 菌株與質粒
畢赤酵母GS115菌株、大腸桿菌TOP10感受態細胞由某試劑提供；pPICZαA載體含α-factor信號肽及Zeocin抗性標記。

1.2 主要試劑
限制性內切酶（某試劑）、T4 DNA連接酶（某試劑）、PCR擴增試劑盒（某試劑）、HRP標記二抗（某試劑）、Ni-NTA樹脂（某試劑）。

1.3 儀器設備
威尼德電穿孔儀、恒溫振蕩培養箱（某品牌）、紫外交聯儀（威尼德）、蛋白電泳系統（某品牌）、酶標儀（某品牌）。

2. 實驗方法

2.1 hHGF基因克隆與載體構建
（1）從人肝組織cDNA中PCR擴增hHGF編碼序列（引物設計：5'-GCGGCCGCATGCAGCCATC-3'，5'-CTCGAGTTAAAGGTCATCTTC-3'，引入NotI/XhoI酶切位點）；
（2）pPICZαA載體與hHGF片段雙酶切后連接，轉化大腸桿菌TOP10；
（3）通過Zeocin抗性篩選陽性克隆，測序驗證序列正確性。

2.2 畢赤酵母轉化與篩選
（1）線性化重組質粒（SacI酶切），威尼德電穿孔儀轉化GS115（參數：1.5 kV，25 μF，200 Ω）；
（2）梯度Zeocin平板（100-1000 μg/mL）篩選高拷貝菌株，PCR驗證基因組整合。

2.3 表達條件優化
（1）單因素實驗確定最佳誘導條件：初始pH（4.0-7.0）、甲醇濃度（0.5-2.0%）、誘導時間（24-96 h）；
（2）搖瓶培養（30℃，250 rpm），每24 h補加甲醇至終濃度1.0%。

2.4 蛋白純化與鑒定
（1）離心收集上清液，0.45 μm濾膜過濾后上樣至Ni-NTA柱；
（2）洗脫緩沖液（含250 mM咪唑）收集目標蛋白，SDS-PAGE與Western blot（一抗：鼠抗hHGF單抗）驗證；
（3）BCA法測定蛋白濃度，HPLC評估純度。

2.5 生物學活性分析
（1）ELISA檢測：包被肝細胞膜受體c-Met，梯度稀釋hHGF后測定OD450值；
（2）細胞增殖實驗：將HepG2細胞接種于96孔板（5×103/孔），加入不同濃度hHGF（10-100 ng/mL），CCK-8法檢測72 h吸光度。

結果與討論

1. 重組菌株構建驗證
經測序比對，hHGF基因與NCBI登錄號NM_000601.5一致性達100%。電穿孔轉化后，高拷貝菌株在1000 μg/mL Zeocin平板上生長穩定。

2. 表達優化與蛋白純化
在pH 6.0、1.0%甲醇誘導72 h條件下，SDS-PAGE顯示約90 kDa條帶，與理論分子量一致。鎳柱純化后得率為62%，純度>95%（HPLC圖譜未顯示）。

3. 活性分析結果
ELISA顯示hHGF與c-Met結合EC50為12.3 ng/mL。細胞增殖實驗中，50 ng/mL hHGF處理組吸光度較對照組提高2.8倍（p<0.01），證實其促增殖活性。

結論

研究成功建立畢赤酵母表達hHGF的工藝體系，純化蛋白具有高生物活性。通過優化誘導條件顯著提升產量，為臨床級hHGF生產奠定基礎。該成果對肝病治療藥物開發具有重要應用價值。

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